很多人通过写心得体会是可以让自己的写作能力提升的，心得体会是可以把学习或者生活中的反思内容用文字书写下来的重要文体，下面是尚华范文网小编为您分享的对实验动物的心得体会5篇，感谢您的参阅。

对实验动物的心得体会篇1

微笑是人类的春天，是开放的花朵，白衣天使的微笑是最美的!我也是白衣天使，身穿白衣大褂;但我是白衣天使之中的小小动物天使。

虽然畜牧兽医专业，在以前被认为是一门低俗的科学，很少有人去专注，往往被忽略。可是随着社会的改变，随着经济的发展，近些年畜牧兽医这门专业被大大重视起来。人类绝不可脱离这门科学，因为世界是千变万化的，是由各种各样的生灵组织起来的，为了世界的万事万物更美好，我们就应该爱护环境，保卫生灵。既然选择了这个专业，我就更应该为主献出自己的一份力量。

人海茫茫寻专职，千万迢迢换求知。来到这里不是我的愿望，所学专业也不是我的梦想，只因为有一种思想把我带到这儿，带到一个完全陌生的地方;一个失去依赖，自力谋生的地方;在这里生存，在这里成长，经过整整一学期的学习;在不知不觉中，喜欢上了我的专业，适应了这里的一切环境，对我校的一切产生了好感，并对其增加了好奇。

但主要前提，首先要学好专业，在这一学期的学习中，我发现来到这里我没有走错。喜欢我的学校，喜欢我的专业，喜喜欢在教室里听课，也喜欢上实验课，做实验活动我最感兴趣了。尤其是遇上了一个与我们相通的班主任;还有给我们带课的认真负责的科任老师，最让我开心的是遇到了一些活泼可爱的同学，我们和睦相处，互相学习，共同组成了一个大的班集体。就因为有了这些舒服的学习环境，使我对于畜牧专业有了一个系统的学习方法和目标。畜牧兽医专业培养的是德、智、体全面发展。掌握畜牧和兽医专业等方面的技能，能从事畜牧和兽医专业等工作的技能型、应用型、科学型相结合的现代兽医专业技术人才。如今是我刚开始学习的时间，做为此校的一份子，我心中想更多的是如何去学习畜牧兽医这门专业。把自己在学校所能学到的知识，将来应用到社会中。因为仅仅通过在学校所学的理论知识是远远不够用的，这需要我们去实践。

曾也有几次想过放弃，想找要换个专业。也许是因为来到一个陌生的地方学习，不适应这样的学习环境吧!经过一段时间的学习，感觉还不错，静下心来仔细想了想，无论换上哪个专业，如果自己不学、不努力，不奋斗，毕业以后依然什么都没有。其实这专业倒挺好的，对于我来说比较切合实际。即使学起来有一定的难度，但是回头想想，人生难免会遇到挫折，在“没有经历过失败的人生是不完整的人生。”想到这里让我感悟到生活就应该敢于尝试、敢于创新、敢于挑战。无论面对什么样的困难，只要不低下头，就一定能过去。现在最好的就是踏踏实实学好自己的专业，毕竟人生的道路不是那么平坦，不是自己能够选择的。然而此时也正是我该学习的机会，应该从各方面好好地锻炼自己，不然以后做什么都干不好。

畜牧兽医才是我学习和受教育的大课堂，在那片广阔的天地里努力奋斗，我的人生价值会得到体现，从而也将会为更加激励的竞争打下更为坚实的基础。

然而，不知不觉中一学期已经过去了，只知道自己在学习上地努力了，如果不经过好几次的实验课和其他同学不进行交流，我还不会发现自己在学习中的不足有以下几点：

一是社会经验不足，只是纸上谈兵。在学习上遇到自己学不懂的知识，不能很好的发挥自己的想法，理论学习方面还有差距，时常感到自己知识太少带来的困惑和迷茫。

二是深入学习研究还不够，没有真正形成自主学习的习惯，依然是被家长、老师、身边的同学提醒来学习，没有安排好学习的计划和方法。

三是在学习中和同学们交流。沟通的能力还不够好，一些细节方面的问题，需要用心灵去感受、去交流。

四是在教学的过程和学习生活中与老师的交流不够多。为了让自己的整体素质和专业学习有进一步的提高，为了更加严格的要求自己，务实自己的作风，给自己定位。就应该真诚的去多交流。

五是在各项活动中的积极程度还不够多，有时心里会感到胆怯、怕做不好，不去尝试因而失去了锻炼的机会。

但是，人生不怕犯错误，就怕错了之后不改，生活也并不一定不美好，而是发现美的眼睛。我们应该改变自己的种种不足，改变自己的思路，学习方法，加强锻炼，积极进去。应该做到：在学习之余去做一些实践活动。主动处理好与同学之间的关系，以相互尊重，理解为原则，主动去学习。各个班级都有比自己有经验的同学，应该向前请教学习方法。

但主演前提是;首先要学好专业，在这一学期的学习中，我发现来到这里不错。我喜欢我的学校，喜欢我的专业，喜欢坐在教室里听课，也喜欢上实验课。做实训活动我最感兴趣了。尤其是遇到了一个与我们心灵相通的班主任，还有给我们代课单位认真负责的科任老师，最让我们开心的事遇到了一群可爱的同学，我们和睦相处，互相学习，共同组成了一个大的班集体。就因为有这些舒适的学习环境，是我对畜牧兽医专业有了一个系统的学习方法和目标。畜牧兽医专业培养的是德、智、体、美全面发展。掌握畜牧和兽医专业等方面的技能，能从事畜牧和兽医等工作的技能型、应用型、科学型相结合的现代兽医专业的技术人才。如今是我刚开学的时间，作为此校的一份子，我心中想的更多的是如何去学好畜牧兽医这们专业。把自己在学校所能学的知识将来能用到社会中。因为仅仅通过在学校所学的理论知识是远远不够的，这就需要我们去实践。

对实验动物的心得体会篇2

?实验目的：通过实际操作，掌握小鼠的一般操作方法，包括小鼠的抓拿、标记、给药(灌胃、腹腔注射、皮下、肌肉、尾静脉注射)、取血(眶后静脉丛，摘眼球)、脊椎脱臼法处死、大体解剖。

二、实验动物：昆明小鼠2只(1雌1雄)

三、实验步骤

1、抓取和固定，标记

2、去毛

3、给药：消化道、腹腔往射、尾静脉注射

4、取血：眼眶后静脉丛、尾静脉、眼球摘除法、断头法

5、麻醉：氯胺酮腹腔麻醉

6、处死：脊椎脱臼法

7、解剖：

雄性：睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺(在膀胱下方，胶质状，透明)

雌性：双角子宫、卵巢

肾上腺、胆囊、甲状腺、胃、肝脏、脾、肺、肾、心脏、甲状腺

四、实验结果

1、抓取和固定标记：

抓取：抓小鼠的尾根部

固定：抓住小鼠的尾根部，让小鼠在粗糙平面上爬行，后拉尾跟部，右手的拇指和食指抓住小鼠两耳及其间的颈部皮肤，小指和无名指将尾巴固定在手掌面。

2、灌胃法：左手抓取小鼠固定后，右手持特制灌胃针，沿一侧口角进针，紧贴咽后壁，头后仰以便伸直消化道，进针2/3后灌生理盐水0.5ml

3、注射给药：

腹腔注射：

从下腹部的两侧进针，进针时针与腹部成45°。进针后稍微晃动针，如无粘滞感则可注射药物。

尾静脉注射：一人固定小鼠，另一人用左手中指和拇指将尾拉直，食指托住尾部在尾动脉位置进针注射0.5ml生理盐水。注射完毕拔出针头，用无菌棉球压迫止血。

4、采??

从眼角内侧0.5cm处进针

眼球摘除法：左手抓取用固定小鼠，右手持弯头镊在眼球根部将眼球摘除，头朝下，眼眶内血迅速流出。

5、麻醉：

0.5%氯胺酮腹腔麻醉：本小鼠重22g，按100mg/kg的药量给药，2分钟麻醉成功

6、处死：

脊椎脱臼法：按住头部，将尾根部向后上方以短促的力量拉即可致死

7、解剖：

雄性：寻找到睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺

雌性：双角子宫、卵巢3.7.2肾上腺：米粒大小

胰腺：位于胃下方，类似于脂肪组织，浑浊状3.7.4， 胆囊：芝麻大小，浅绿色，半透明，甲状腺：紧贴环状软骨，另可解剖出胃、肝脏、脾、肺、肾、心脏。

五、实验讨论

1、小鼠抓取的感受：

小鼠性情较温顺，一般不会咬人，比较容易抓取固定。通常用右手提起小鼠尾巴将其放在鼠笼盖或其它粗糙表面上，在小鼠向前挣扎爬行时，用左手拇指和食指捏住其双耳及颈部皮肤，将小鼠置于左手掌心、无名指和小指夹其背部皮肤和尾部，即可将小鼠完全固定。如要进行手术或心脏采血应先行麻醉再操作，如进行解剖实验则必须先行无痛处死后再进行。

2、小鼠尾静脉注射感受：

首先，注射前尾巴用稍热的水浸泡几分钟，有利于注射;其次，先远后尽，不要一开始就从尾根部，那样失败了不好办;再次，进血管后注意保持稳定，针尖很容易刺穿血管的。尾静脉就在尾巴的正左右两边，先用酒精用力擦，可以去掉部分角质，然后按住近心端让充血，就很容易看到了。进针大概1~2厘米是最合适的。

尾静脉注射时，可用45~50度的温水浸润半分钟或用酒精擦拭，可使血管扩张，同时也可软化表皮角质。以左手拇指和食指夹住鼠尾，使静脉充盈，中指帮助无名指和小指捏住鼠尾末梢，右手持注射器(连5号细针头)，针头与静脉夹角一般小于30度，从距尾尖2 - 3厘米处进针，此处皮薄易进入，先抽回血，见到血后再缓慢注入少量药液，如无阻力，表示针头已进入静脉，可继续往入。一般推注速度为0.05 - 0.10m秒，一次注入量为0.05 - 0.25ml/10g体重。如反复注入，应尽可能从尾末端开始，以后向尾根部方向移动注射。

对实验动物的心得体会篇3

来美国加州已经整整1个月，昨天才刚刚办好学校的身份卡，终于可以正式接受动物实验培训了。今天上午，本来是一个来自印度的博士负责培训，但后来她需要去上课，临时换成一个华裔博士(他不会说中文，我只听他说过“剪头发”三个字)，这个陈博士很有一些侠客风骨，什么事情都比较主动帮助。他告诉我，最近几天的时间他都可以给我支配，让我十分感动。本文也作为来美1月的体会小结吧。

我要学习的具体内容是如何神经外手术后脑损伤动物模型，就是把老鼠的大脑大概1/6的部位切除。这个实验最重要的是保持手术过程的一致，由于手术容易脑出血，因此手术操作尽量轻柔。

今天上午9点前我早早来到实验室，等到10点后，陈博士过来来说现在就可以开始，我说很遗憾，12点我必须离开，因为我女儿的入学体检安排在1点，第一次做实验怕干不完，言外之意是等明天再说吧。他说没关系，干到什么程度你随时可以离开，我心里说那多么不好意思，如果试验进行到一半，后续的整理要老师来负责。不过我也希望能早点开工，于是就接受了。毕竟开始的有些突然，我本来是准备在他指导下自己来做全部的工作，结果大部分事情都是他帮忙，包括把动物从动物房拿到实验室，准备手术器械，准备手术显微镜等。整个实验中，所有的准备工作几乎都是陈博士代劳，我只做了最核心的工作，我想起在国内读博士的时候，许多技术活都是从打下手，当学徒开始的。

由于第一次做这个实验，动作比较缓慢，到12点才终于把脑子切掉，后面的缝合，以及动物护理等都没有时间做了，这些内容都留给陈博士了。

开始前，陈博士问我为什么要用这个模型，你过去不是做脑出血的模型吗?我说主要是觉得这个损伤是属于计划性损伤，比较符合临床实际，很适合开展预适应方面的研究。另外我觉得在中国目前使用的比较少，我也希望能把这个模型引进到中国。他听后非常高兴，认为我的观点是非常好的，他也这么认为。

结合最近见习的训练的情况，我觉得这里关于动物实验方面值得学习的内容有许多。这里暂时只讲几点体会。

一是对动物的管理非常严格。动物房的条件非常好，比实验室的卫生条件还要好，居住空间有明确的规定，一只大笼子内只能有2只大鼠。进入动物房必须登记，拿走几只动物，动物的编号和实验目的要详细记录。

二是实验步骤的记录非常详细。到具体实验过程，详细的记录更能体现。每只动物都有一个档案，编号，体重，麻醉时间，手术时间，每一个具体的操作步骤都有详细的记录。动物模型做好后，经过适当恢复，送回动物房，仍需要登记。当处死动物前，每个都需要进行行为学的记录，进行动物一般情况的观察和记录。然后处死动物，处死动物必须采用安乐死。动物处死后取出大脑要进行照相记录，然后根据实验目的对脑组织进行后续的处理。总之，在关于动物实验的整个过程都有非常详细的记录。如果那个动物有可能出现异常结果，可以回头寻找原因。过去有许多老师在进行研究生培养的督导时，经常建议能作好原始记录，但都是强调记录本如何规范，对内容和细节并不关心，实际上记录本的方式并不是理想的记录方式。原始记录不一定都要在一个本子上体现。

三是协作精神。我来这里一个月，听到最多的问题是，你要做什么研究，我们是否可以谈谈，实际上大家都非常相互关心别人的研究内容，随时开展相互讨论，相互请教的事情也随时可见，也有许多人出来结果过来请教如何解释。我的研究内容涉及到几个基本的内容，其中一个是动物模型，因为过去没有做过需要从头学习，结果本组内至少有一大半人都积极要求指导。即使那些不主动的，去看他们实验也是随时停下来让我看，并耐心给我解释注意细节。总的感觉是他们都希望把自己所有经验，所有技巧都不作任何保留传授给你。另外一个研究内容是动物行为学检测，这个因为需要其他人协助双盲对照，结果早就有人预约说可以帮助解决。总之，在这里大家的相互协作精神非常的普遍。你不会看到有人怕别人学走你的思想，怕别人掌握了你独门绝技。

对实验动物的心得体会篇4

明天就要进行动物学实习的展示了，好紧张，会不会抽到我答题呢???很有可能，看来不能随便乱抱佛脚，我会努力准备，不会让组里成员失望的，当然，前提是抽到我啦~~

动物学实习是我们在野外实习的一个相当重要的环节，通过这次的野外实习，不仅仅是我，大家都收获了很多。这次的实习不仅使我们更近距离的接触了各种动物，了解各种动物，巩固了我们的专业知识;同时我们也锻炼了我们各个方面的能力，开拓了眼界，提高了我们学习的主动性。实习不仅仅使我们亲近自然，得以观察到学校里没见过的动物，弥补了学校中大多都是标本或标本不足的情况，而且弥补了我们在理论课堂上记忆抽象概念而没有动物图像的不足。

为期5天的动物学实习，在端午节那天结束了。由于有了植物学实习的经验，我们对动物学实习的痛苦早已做好了心理准备。植物学实习的时候，我们是集体行动。所有人都围着老师和植物转。而动物学实习，我们的自主性极大。整个动物学实习下来，我觉得最重要的是“眼明手快”。那些瓢虫、蛾、蜂等等都隐藏在密密麻麻的树叶或草丛中，需要仔细地观察才能发现。而在帽峰山最难捕捉的就是大大的凤蝶了。它们“身手敏捷”，每次从深谷飞出，都引起一片惊呼，但我们尝试了无数次，最终还是没有抓住!很失望!但是，在火炉山，由于地势较为平坦，峡谷不深，加上有了帽峰山捕蝶的经验，我们这次很顺利地捕捉到了很多种类的蝴蝶。

可能是由于小时候，经常在山里玩耍，去摘野果，捉蝉，掏鸟窝之类的，我一点也不害怕那些动物，反而觉得很有趣。当然，我们抓动物不是随便乱来的。设想过我们要抓哪一类动物，我们初步了解了它们的习性，然后开始寻找目的地。在火炉山，我就在水边的小石头下，抓到一条很大的马陆，还有在浅水处抓到一只小蟹，很开心!上山不久，我还抓到一只正在蜕皮的蝉!那个蝉壳已经从背中线裂开，可以看到幼蝉绿色的背部!等到11点半休息的时候，居然发现蝉已经完全从壳里钻出来了!绿绿的!整个过程也就不到一个小时!可惜抓到它时，卡氏液不在我们这个小组(因为我们这个大组分成两个小组来行动了)。不然可以把它固定在壳里。也很可惜，那天没能向老师说明我观察到的这个现象。

在大学城，我在湖边抓了一只有绿色条纹的蜻蜓。这种蜻蜓很难抓!它总是在湖边忽悠一下就飞走。我觉得自己有点邪恶啊!因为我是趁它产卵的时候，用捕虫网抓住它的。在野外实习的过程中，我们还看到了蜻蜓交尾和蝴蝶交尾的现象。学习了动物学之后，我们不再以玩乐的眼光来观察动物，而是从专业的角度来观察思考，也发现了一些动物世界中有趣的事情，而不仅仅是看大盘表面现象。

在整个实习过程中，我们小组分工合作,大组的联系就不够紧密。实习路上，我们打趣说我们这是西天取经呢!

制作标本的时候，我们一起查阅资料，为确定每一只虫子的目而纠结;制作标本的时候，为蚂蚁的微小而叹息。制作标本的过程，我们不断翻书查阅，使我们的知识得到一个梳理和巩固。

我觉得，这次动物学实习又一次增进了小组成员之间的感情，增强了同学们之间的了解，为我们的大学生活增加了更多有趣的故事。同时，也学习到了很多知识。最后，老师人性化地取消了个人考试，让我们很感动!

三天的到外实习，很累很辛苦但真的很快乐~~~想想就够乐的咯，这辈子也就这次动物学实习了，真的没有什么机会可以以这副武装到广州的帽峰山、火炉山和大学城横行啊!哈哈，想到别人的眼光我们虽然一开始也挺尴尬的，可是后来，大家都觉得自己开心就好，何必在乎其他人的眼光。爬山爬到累的腿都直抖了~~~火炉山的阶级太恐怖了~~哪有那么陡的~~顺便崇拜一下那些每天登山的人~~最近肯定提到爬山，肯定不去了。我们组的合作良好，昆虫捉到很多，蝴蝶扑到了很多，大家都是捕蝶大户了。希望明天的展示顺利进行，老师有问我们必答!!加油啦加油啦

对实验动物的心得体会篇5

肺水肿是指由于某种原因引起肺内组织液的生成和回流平衡失调，使大量组织液在很短时间内不能被肺淋巴和肺静脉系统吸收，从肺毛细血管内外渗，积聚在肺泡、肺间质和细小支气管内，从而造成肺通气与换气功能严重障碍。在临床上表现为极度的呼吸困难，端坐呼吸，发绀，大汗淋漓，阵发性咳嗽伴大量白色或粉红色泡沫痰，双肺布满对称性湿啰音。肺水肿为内科危急重症，临床症状凶险，病情发展急剧，易并发呼吸、循环衰竭，病死率极高，如果不及时诊治，会引发严重的后果。目前，国内外复制实验性肺水肿的模型很多，如油酸诱导，注射生理盐水，吸入光气等方法，都有很明显的现象。我们采用切断迷走神经的方法，对大鼠肺系数等指标进行观察，观察肺水肿模型是否建立。

1 材料与方法

1.1 实验动物：sd大鼠24只，体重做任何处理;b组为实验组，将大鼠称重麻

200-290g，雌雄随意，由成都医学院实醉(用3.6%水合氯酸麻醉，按100g/1ml的验动物中心提供。 量)后，找出一侧迷走神经，用手术剪剪断; 1.2 实验药品与试剂：3.6%水合氯酸。 c组也为实验组，将大鼠称重麻醉(用3.6%1.3 实验仪器与器械：电子天平，注射器，水合氯酸麻醉，按100g/1ml的量)后，找烧杯，手术器械(解剖刀，解剖盘，解剖出两侧的迷走神经剪断。手术处理后，观察剪刀，手术线 眼科镊等)、滤纸，计时器大鼠有无呼吸频率改变、湿啰音、咳血、身等。 体抽搐等体征变化，0.5小时后处死所有大2 方法 鼠。在解剖时，先结扎气管以免液体外溢，将实验动物随机分为3个组，a组b组c 然后将肺和心脏一同取出， 剪去心脏和表面组各8只大鼠。a组为假手术组，将大鼠称的脂肪组织，并用滤纸吸干表面的液体，最重，麻醉(用3.6%水合氯酸麻醉，按后分别将各组大鼠肺称重，计算肺系数(肺100g/1ml的量)后，仅找出迷走神经，不 系数=肺重量(g)/大鼠体重(kg))。

3 实验结果现象

在整个实验中，b组c组中各有一只大鼠在剪断迷走神经时不慎将颈总动脉剪断，导致大出血死亡，a组b组c组都没有出现湿啰音，也无咳嗽，鼻孔与口腔无粉红色泡沫样液体出现，也没有抽搐，整个试验期间大鼠都没有死亡。根据实验结果现象分析，并没有出现肺水肿。 4结论与讨论

肺水肿是临床较为常见的综合病症，有很多的致病因素。由于对其发病机尚未完全阐明，因此，常常借助于一些动物模型进行发病机制和相关治疗的试验研究。结扎迷走神经是急性肺水肿动物模型是常用的一种动物模型。迷走神经支配呼吸、消化两个系统的绝大部分器官以及心脏的感觉、运动以及腺体的分泌。因此，迷走神经损伤可引起循环、消化和呼吸系统功能失调。在这次试验中，结扎迷走神经一段时间后，即可观察到b、c与a组对照出现的显著性差异，首先为大鼠的呼吸急促、紫绀;试验中观察到a组大鼠双肺呼吸音清晰，试验b、c两组大鼠双肺呼吸急促浑浊，并且有少许的红色粘液出现在鼻孔，显示试验组发生肺水肿，肺泡弥散功能严重降低;试验后解剖各组大鼠，对照组双肺饱满，呈粉红色，表面光滑，未见淤血，肺切面未见溢出粉红色液体。试验组肺体积明显增大、被膜光亮、湿润，表面呈现红褐色或暗紫色，可见片状淤血出血斑。目前，国内大量研究表面，肺重系数是一个衡量肺水肿比较好且准确的指标。

大鼠经过结扎迷走神经可以在短时间内诱导肺水肿的发生，并且通过检测几项指标都可以观察到明显的变化，效果较好。夹闭迷走神经来诱导大鼠肺水肿动物模型简单易操作实施，成本小，重复性高，可以作为临床上比较理想的肺水肿动物模型